小鼠腎腺癌細胞的培養方法及注意事項概述如下：

　　在培養小鼠腎腺癌細胞時(shí)，首先需要準備適當的培養基，通常使用的是DMEM（高糖）培養基，并添加10%的胎牛血清（FBS）以及必要的抗生素，如青霉素和鏈霉素（P/S），以防止細菌污染。細胞應在含有95%空氣和5%二氧化碳的培養箱中，于37℃恒溫條件下進(jìn)行培養。

　　收到細胞后，應首先檢查細胞培養瓶是否破損，培養液是否有漏出或渾濁現象。確認無(wú)誤后，用75%的酒精對培養瓶表面進(jìn)行消毒，然后將培養瓶放入培養箱中靜置24小時(shí)，使細胞狀態(tài)穩定。在顯微鏡下觀(guān)察細胞生長(cháng)狀態(tài)，當細胞密度達到80%90%時(shí)，即可進(jìn)行傳代培養。

　　傳代時(shí)，應先棄去舊的培養基，用不含鈣、鎂離子的PBS溶液潤洗細胞12次。然后加入適量的胰酶消化液，置于培養箱中消化12分鐘，待細胞大部分變圓并脫落后，加入含血清的培養基終止消化。將細胞懸液離心后，棄去上清液，用新的培養基重懸細胞，并按適當的比例分到新的培養瓶中繼續培養。

　　在培養過(guò)程中，需要注意定期更換培養基，通常建議每周更換2~3次。同時(shí)，應定期觀(guān)察細胞生長(cháng)狀態(tài)，記錄細胞形態(tài)、密度等信息。當細胞生長(cháng)至一定數量時(shí)，可考慮進(jìn)行凍存，以便后續實(shí)驗使用。

　　總之，小鼠腎腺癌細胞的培養需要嚴格的無(wú)菌操作、適當的培養條件和定期的觀(guān)察記錄，以確保細胞的健康生長(cháng)和實(shí)驗的順利進(jìn)行。